Água triptona frasco 500g

Água triptona frasco 500g

Código: AG-7003
Marca: HIMEDIA
Apresentação: 1 unidade

Meio de cultura liofilizado para testes de indol e para o cultivo de microrganismos exigentes, fornecendo nutrientes de peptona.

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Informações técnicas do produto

Água triptona frasco 500g

A Água Triptona é usada para a detecção da produção de indol por coliformes. Composição** Ingredientes Gms / Litro Hidrolisado enzimático de caseína 20.000 Cloreto de sódio 5.000 PH final (a 25°C) 7,5 ± 0,2 ** Fórmula ajustada, padronizada para atender aos parâmetros de desempenho Instruções Dissolver 25 gramas em 1000 ml de água destilada. Aqueça se necessário para dissolver completamente o meio. Distribuir em tubos e esterilizar em autoclave à pressão de 15 libras (121 ° C) por 15 minutos. Princípio e Interpretação A água triptone é recomendada pela APHA (1) e pelo Comitê ISO (2) para a detecção da produção de indol por coliformes, que é uma característica fundamental na diferenciação de bactérias. Uma leve modificação da água de triptone (M463I) é recomendada pelo comitê ISO (3) para o mesmo objetivo. Este teste demonstra a capacidade de certas bactérias decomporem o aminoácido triptofano em indol, que se acumula no meio (4). O hidrolisado enzimático de caseína é um bom substrato para a produção de indol devido ao seu alto teor de triptofano. Certos organismos decompõem o aminoácido triptofano com a ajuda de enzimas que mediam a produção de indol por atividade hidrolítica (5). O indol produzido pode ser detectado pelo reagente de Kovacs ou Ehrlichs (6). O indol combina-se com o aldeído presente no reagente acima para dar cor vermelha na camada alcoólica. A camada de álcool extrai e concentra o complexo de cor vermelha. A água de triptona é usada em conjunto com o caldo biliar verde brilhante a 2% (M121) para determinar o número mais provável (MPN) de E. coli na amostra de alimentos. O crescimento e a produção de gás em M121 e a produção de indol em água de triptona após a incubação de ambos os meios a 44 ± 1 ° C são usados como base para o teste presuntivo de E. coli. Para determinação do indol, inocule o meio com inóculo de uma cultura pura de 18 a 24 horas. Incubar os tubos a 35 ± 2 ° C por 18-24 horas. Adicione 0,5 ml de reagente indol (R008) diretamente ao tubo e agite. Deixe os tubos repousarem por 5 a 10 minutos. A formação de um anel vermelho no topo do tubo indica produção de indol. O teste de indol é recomendado como um auxílio na diferenciação de microrganismos com base na produção de indol. Para uma identificação completa dos organismos, é necessária mais confirmação bioquímica. Controle de qualidade Aparência: Creme para amarelar pó homogêneo de fluxo livre Cor e clareza do meio preparado: Solução límpida de cor amarela sem precipitado Reação: Reação de solução aquosa a 2,5% p / v a 25 ° C. pH: 7,5 ± 0,2 pH: 7,30-7,70 Resposta cultural Características culturais observadas após uma incubação a 35-37 ° C por 24 horas. Adicione 0,2-0,3 ml de reagente de indol de kovac (R008)a cada tubo após a incubação. Resposta cultural Organismo: Escherichia coli ATCC 25922 Inoculação: 50-100 Crescimento: Exuberante Reação de Indol: Reação Positiva, anel vermelho no interface do meio Organismo: Enterobacter aerogenes ATCC 13048 Inoculação: 50-100 Crescimento: Exuberante Reação de Indol: Reação Negativa, sem desenvolvimento de cor / anel nublado Armazenamento e prazo de validade Armazenar abaixo de 30°C em recipiente bem fechado e o meio preparado a 2-8°C. Use antes da data de validade no rótulo. Referência 1. Greenberg A. E., Clesceri L. S. e Eaton A. D., (Eds.), 1998, Métodos Padrão para o Exame de Água e Wastewater, 20a Ed., APHA, Washington, D.C. 2. Organização Internacional de Normalização (ISO), 1993, Projeto de ISO / DIS 9308-1. 3. Organização Internacional de Normalização (ISO), 1990, Projeto de ISO / DIS 7251: 1993. 4. Collee J. G., Fraser A. G., Marmion B. P., Simmons A., (Eds.), Mackie e McCartney, Practical Medical Microbiology, 1996, 14ª edição, Churchill Livingstone. 5. MacFaddin J. F., 2000, Bioochemical Tests for Identification of Medical Bacteria, 3ª Ed., Williams e Wilkins, Baltimore. 6. Finegold S. M. e Baron E. J., 1986, Bailey e Scotts Diagnostic Microbiology, 7ª Ed., The C.V. Mosby Co., St. Louis.