Triptona de soja com lecitina e tween 80 agar frasco 500g

Uso previsto: Recomendado para determinar a eficácia da higienização de recipientes, superfícies de equipamentos, cosméticos miscíveis em água, etc. Composição** Ingredientes Gms/litro Triptona 15.000 Peptona de soja 5.000 Cloreto de sódio 5.000 Lecitina 0,700 Polissorbato 80 (Tween 80) 5.000 Ágar 15.000 pH final (a 25 °C) 7,3±0,2 **Fórmula ajustada e padronizada para se adequar aos parâmetros de desempenho Instruções: Suspender 45,7 gramas em 1000 ml de água purificada/destilada. Aquecer até ferver para dissolver completamente o meio. Esterilizar em autoclave a uma pressão de 15 libras (121 °C) durante 15 minutos. Arrefecer até 45-50 °C. Misturar bem e verter em placas de Petri esterilizadas. Princípio e interpretação: O ágar triptona-soja com lecitina e polissorbato 80 é usado em placas RODAC (Replicate Organism Detection and Counting) (1) para a detecção e enumeração de microrganismos presentes em superfícies de importância sanitária (2,3). A triptona e a peptona de soja fornecem compostos nitrogenados e outros nutrientes essenciais para a replicação microbiana. A lecitina e o polissorbato 80 (Tween 80) são neutralizadores que inativam os desinfetantes residuais do local onde a amostra é coletada (4). A lecitina neutraliza os compostos de amônio quaternário e o polissorbato 80 neutraliza os desinfetantes fenólicos, hexaclorofeno, formalina e, com a lecitina, etanol (5). A coleta de amostras de áreas antes e depois do tratamento com desinfetante avalia os procedimentos de limpeza no saneamento ambiental. A presença e o número de microrganismos são determinados pelo aparecimento de colônias na superfície do ágar (6). Após a contagem das colônias, realize testes bioquímicos para identificação. Tipo de amostra: Amostras farmacêuticas, esfregaços de recipientes, superfícies de equipamentos, cosméticos miscíveis em água etc. Coleta e manuseio de amostras: Para esfregaços de recipientes, superfícies de equipamentos e amostras de cosméticos miscíveis em água, siga as técnicas adequadas para o manuseio de amostras, de acordo com as diretrizes estabelecidas (1). Após o uso, os materiais contaminados devem ser esterilizados em autoclave antes de serem descartados. Advertências e precauções: Leia o rótulo antes de abrir o recipiente. Use luvas de proteção/vestuário de proteção/proteção ocular/proteção facial. Siga as boas práticas de laboratório microbiológico ao manusear amostras e culturas. As precauções padrão, de acordo com as diretrizes estabelecidas, deve ser seguidas ao manusear amostras. As diretrizes de segurança podem ser consultadas nas fichas de dados de segurança individuais. Limitações 1. Este meio é um meio de uso geral e pode não suportar o crescimento de organismos exigentes. 2. Testes bioquímicos e sorológicos adicionais devem ser realizados para identificação completa. Desempenho e avaliação: O desempenho do meio é esperado quando usado de acordo com as instruções do rótulo, dentro do prazo de validade e armazenado na temperatura recomendada. Controle de qualidade Aparência: Pó homogêneo de cor creme a amarela, de fluxo livre Gelificação: Firme, comparável a gel de ágar a 1,5% Cor e clareza do meio preparado: Gel de cor amarela clara a âmbar médio, transparente a ligeiramente opalescente, formado em placas de Petri Reação: Reação de solução aquosa a 4,57% p/v a 25 °C. pH: 7,3±0,2 pH 7,10-7,50 Resposta cultural Foi observada promoção do crescimento após incubação a 30-35 °C por 18-24 horas para bactérias e por <=5 dias para fungos. Taxa de recuperação A taxa de recuperação é considerada 100% para o crescimento bacteriano em: Ágar Caseína de Soja e crescimento fúngico em Ágar Sabouraud Dextrose. Propriedades promotoras de crescimento O crescimento de microrganismos comparável ao obtido anteriormente com lotes de meio previamente testados e aprovados ocorre à temperatura especificada por um período não superior ao mais curto especificado, inoculando <=100 ufc (a 30-35 °C por <=18 horas). Teste de neutralização A zona de inibição menor em comparação com o SCDA indica a neutralização de compostos de amônio quaternário por este meio. Organismo - Promotor de crescimento - **Bacillus spizizenii ATCC 6633 (00003*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 25923 (00034*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - Staphylococcus aureus subsp. aureus ATCC 6538 (00032*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - Escherichia coli ATCC 25922 (00013*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - Escherichia coli ATCC 8739 (00012*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 (00025*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - ^Pseudomonas paraeruginosa ATCC 9027 (00026*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -1 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - Salmonella Abony NCTC 6017 Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - $ Kokuria rhizophila ATCC 9341 Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - Salmonella Typhimurium ATCC 14028 (00031*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: 18 – 24hs Organismo - Promotor de crescimento - Candida albicans ATCC 10231 (00054*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: < = 5 dias Organismo - Promotor de crescimento - Candida albicans ATCC 2091 (00055*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: < = 5 dias Organismo - Promotor de crescimento - #Aspergillus brasiliensis ATCC 16404 (00053*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: < = 5 dias Organismo - Promotor de crescimento - Candida albicans ATCC 10231 (00054*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 20 – 25°C Período de incubação: < = 5 dias Organismo - Promotor de crescimento - Candida albicans ATCC 2091 (00055*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 20 – 25°C Período de incubação: < = 5 dias Organismo - Promotor de crescimento - #Aspergillus brasiliensis ATCC 16404 (00053*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 20 – 25°C Período de incubação: < = 5 dias Organismo - Promotor de crescimento - Clostridium sporogenes ATCC 19404 (00008*) Inóculo (CFU): 50 - 100 Crescimento: Exuberante Valor observado do lote (UFC): 35 -100 Recuperação: > = 70% Temperatura de incubação: 30 – 35°C Período de incubação: < = 5 dias Chave: (*) Números WDCM correspondentes. ^ Anteriormente conhecido como Pseudomonas aeruginosa. # Anteriormente conhecido como Aspergillus niger. **Anteriormente conhecido como Bacillus subtilis subsp. spizizenii. $ Anteriormente conhecido como Micrococcus luteus. Armazenamento e prazo de validade: Armazenar entre 10 e 30 °C em um recipiente bem fechado e o meio preparado entre 20 e 30 °C. Utilizar antes da data de validade indicada no rótulo. Após a abertura, o produto deve ser armazenado adequadamente em local seco, após fechar bem o frasco, a fim de evitar a formação de grumos devido à natureza higroscópica do produto. O armazenamento inadequado do produto pode levar à formação de grumos. Armazenar em local seco e ventilado, protegido de temperaturas extremas e fontes de ignição. Fechar bem o recipiente após o uso. O desempenho do produto é melhor se utilizado dentro do prazo de validade indicado. Descarte: O usuário deve garantir o descarte seguro por autoclave e/ou incineração das preparações usadas ou inutilizáveis deste produto. Siga os procedimentos laboratoriais estabelecidos para o descarte de materiais infecciosos e os materiais que entrarem em contato com a amostra devem ser descontaminados e descartados de acordo com as técnicas laboratoriais atuais (7,8). Referências 1. Hall and Hartnett, 1964, Public Hlth. Rep., 79:1021. 2. MacFaddin J.F., 1985, Media for Isolation-Cultivation-Identification-Maintenance of Medical Bacteria, Vol. I, Williams and Wilkins, Baltimore. 3. Richardson (Ed)., 1985, Standard Methods for the Examination of Dairy Products, 15th ed., APHA, Washington, D.C. 4. Brummer, 1976, Appl. Environ. Microbiol., 32:80. 5. Favero (Chairm), 1967, Biological Contamination Control Committee, a state of the art report., Am. Assoc. for contamination control. 6. Murray PR, Baron, Pfaller, and Yolken (Eds.), 2003, In Manual of Clinical Microbiology, 8th ed., ASM, Washington,D.C. 7. Isenberg, H.D. Clinical Microbiology Procedures Handbook 2nd Edition. 8. Jorgensen, J.H., Pfaller, M.A., Carroll, K.C., Funke, G., Landry, M.L., Richter, S.S and Warnock., D.W. (2015) Manual of Clinical Microbiology, 11th Edition. Vol. 1.