Agar soro de laranja frasco 500g

Ágar Soro de Laranja é recomendado para o cultivo e enumeração de microrganismos associados à deterioração de produtos cítricos, cultivo de Lactobacilli, outros organismos acidúricos e fungos patogênicos. Composição** Ingredientes Gms/Litro Tryptone 10.000 Extrato de levedura 3.000 Dextrose (Glicose) 4.000 Hidrogenofosfato dipotássico 2.500 Soro laranja (sólidos de 200 ml) 9.000 Ágar 17.000 PH final (a 25°C) 5,5 ± 0,2 ** Fórmula ajustada, padronizada para atender aos parâmetros de desempenho Instruções Suspenda 45,5 gramas em 1000 ml de água purificada/destilada. Aqueça até ferver para dissolver completamente o meio. Esterilizar por autoclavagem a 15 libras de pressão (121°C) por 15 minutos. EVITE O SUPERAQUECIMENTO. Arrefecer a 45-50°C.Misturar bem e deitar em placas de Petri estéreis. Princípio e Interpretação Os sucos de frutas são geralmente ácidos, com valores de pH variando de aproximadamente 2,4 para suco de limão a 4,2 para suco de tomate.O baixo pH desses alimentos é seletivo para leveduras, bolores e alguns grupos de bactérias acidúricas. Os microorganismos de maior importância nos sucos cítricos são as bactérias do ácido lático, principalmente espécies de Lactobacillus e Leuconostoc, leveduras e Bolores. A deterioração microbiana desses sucos de frutas cítricas é mais comumente causada por micróbios acidúricos, como o ácido lático bactérias e leveduras. As bactérias do ácido lático incluem Lactobacillus fermentum, L.plantarum e Leuconostoc mesenteroides. O ágar de soro de laranja é recomendado pela APHA (1) para o cultivo de lactobacilos e outros organismos acidúricos. O Ágar Soro de Laranja foi originalmente desenvolvido por Murdock et al (2) e Hays (3) para o exame de concentrados de citros. Hays e Reister ainda mais utilizou este meio para estudar a deterioração do suco de laranja (4). Foi relatado meio de ágar desidratado contendo soro laranja de Stevens (6). O caldo de soro de laranja é usado para iniciar o crescimento de fungos saprófitos e patogênicos em pequenas amostras (5). O triptone fornece compostos nitrogenados, carbonáceos essenciais, aminoácidos de cadeia longa e outros nutrientes essenciais. Dextrose (glicose) serve como carboidrato fermentável e fonte de energia. O extrato de levedura fornece vitaminas do complexo B, que estimulam o crescimento. O soro laranja fornece um ambiente ideal para a recuperação de microrganismos tolerantes a ácidos de produtos cítricos. Tipo de amostra: Amostras de alimentos Coleta e manuseio de amostras: Para amostras de alimentos, siga as técnicas apropriadas para coleta e processamento de amostras, de acordo com as diretrizes (1). Após o uso, os materiais contaminados devem ser esterilizados em autoclave antes de serem descartados. Aviso e precauções: Leia o rótulo antes de abrir o recipiente. Use luvas de proteção /vestuário de proteção/proteção ocular/proteção facial. Siga as boas práticas de laboratório microbiológico ao manusear amostras e cultura. Precauções padrão conforme diretrizes estabelecidas devem ser seguidas durante o manuseio das amostras. As diretrizes de segurança podem ser consultadas em folhas de dados de segurança. Limitações: 1. Algumas cepas podem apresentar baixo crescimento devido a variações nutricionais. Desempenho e Avaliação O desempenho do meio é esperado quando usado de acordo com a direção na etiqueta dentro do prazo de validade, quando armazenado em temperatura recomendada. Controle de qualidade Aparência: Creme para amarelar pó homogêneo de fluxo livre Gelificação: Firme, comparável ao gel de agar a 1,7%. Cor e clareza do meio preparado: Formas de gel claras a ligeiramente opalescentes de cor âmbar médio a escuro em placas de Petri Reação: Reação de solução aquosa a 4,55% p/v a 25°C. pH: 5,5 ± 0,2 pH: 5,30-5,70 Resposta cultural Características culturais observadas após uma incubação a 35-37°C por 40-48 horas (espécies fúngicas são incubadas a 25-30°C) Resposta cultural Organismo: Aspergillus brasiliensis ATCC 16404 (00053*) Inoculação: 50-100 Crescimento:Bom-Exuberante Recuperação: - Organismo: Candida albicans ATCC 10231 (00054*) Inoculação: 50-100 Crescimento:Bom-Exuberante Recuperação: >=50% Organismo: Lactobacillus acidophilus ATCC 4356 Inoculação: 50-100 Crescimento:Bom-Exuberante Recuperação:>=50% Organismo: Lactobacillus fermentum ATCC 9338 Inoculação: 50-100 Crescimento:Bom-Exuberante Recuperação:>=50% Organismo: Leuconostoc mesentoroides ATCC 12291 Inoculação: 50-100 Crescimento:Bom-Exuberante Recuperação: >=50% Organismo: Saccharomyces cerevisiae ATCC 9763 (00058*) Inoculação: 50-100 Crescimento:Bom-Exuberante Recuperação: >=50% Chave: # - Anteriormente conhecido como Aspergillus niger * - Números correspondentes do WDCM. Armazenamento e validade: Armazenar entre 10-30°C em um recipiente bem fechado e o meio preparado a 2-8°C. Use antes da data de validade no rótulo. Na abertura, o produto deve ser adequadamente armazenado seco, depois de fechar bem o frasco para evitar formação de grumos devido à natureza higroscópica do produto. O armazenamento inadequado do produto pode levar à formação de caroços. Armazenar em área ventilada e seca, protegida de temperaturas extremas e fontes de ignição. Fechar bem o recipiente depois de usar. Use antes da data de validade no rótulo. O desempenho do produto é melhor se usado dentro do prazo de validade indicado. Descarte: O usuário deve garantir o descarte seguro por autoclave e/ou incineração de preparações usadas ou não utilizáveis deste produto.Siga os procedimentos laboratoriais estabelecidos ao descartar materiais infecciosos e materiais que entrem em contato com a amostra deve ser descontaminada e descartada de acordo com as técnicas laboratoriais atuais (7,8). Referências: 1.Salfinger Y., and Tortorello M.L. Fifth (Ed.), 2015, Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Foods, 5th Ed., American Public Health Association, Washington, D.C. 2.Murdock P. I., Folinazzo J. F., and Troy V. S., 1951, Food Technol., 6:181. 3.Hays G. L., 1951, Proc. Florida State Hortic. Soc., 54:135. 4.Hays G. L. and Reister D. W., 1952, Food Technol., 6:186. 5.MacFaddin J. F., 1985, Media for Isolation-Cultivation-Identification-Maintenance of Medical Bacteria, Vol. 1, Williams and Wilkins, Baltimore 6.Stevens J. W., 1954, Food Technol., 8:88. Revision : 03 / 2019 7..Isenberg, H.D. Clinical Microbiology Procedures Handbook. 2nd Edition. 8. Jorgensen,J.H., Pfaller , M.A., Carroll, K.C., Funke, G., Landry, M.L., Richter, S.S and Warnock., D.W. (2015) Manual of Clinical Microbiology, 11th Edition. Vol. 1.