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Agar base m-fc frasco 500g
Código: AG-5007
Marca: HIMEDIA
Apresentação: 1 unidade
Meio de cultura liofilizado. Indicado para a enumeração de coliformes fecais em água. Também é um meio de membrana.
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Informações técnicas do produto
Agar base m-fc frasco 500g
O M-FC Agar Base é usado para a detecção e enumeração de coliformes fecais usando a técnica de filtro de membrana em temperatura (44,5°C). Composição** Ingredientes Gms / Litro Triptose 10.000 Peptona proteica 5.000 Extrato de levedura 3.000 Lactose 12.500 Mistura de sais biliares 1.500 Cloreto de sódio 5.000 Azul anilina 0,100 Ágar 15.000 PH final (a 25 ° C) 7,4 ± 0,2 ** Fórmula ajustada, padronizada para atender aos parâmetros de desempenho Preparo: Suspenda 52,1 gramas em 1000 ml de água destilada contendo 10 ml de ácido rosólico a 1% (FD058). Aqueça até ferver para dissolver o meio completamente. NÃO AUTOCLAVE. Arrefecer até 45 ° C e deitar em placas de Petri estéreis. Princípio e Interpretação O M-FC Agar Base, projetado por Geldreich et al (2), é usado para a detecção e enumeração de coliformes fecais usando o método técnica de filtro de membrana. Este meio é baseado na propriedade dos coliformes fecais para crescer a 44-45 ° C (1). Base de ágar M-FC é recomendado pela APHA (3) e por vários outros padrões para detecção de coliformes fecais (4-6). A APHA recomenda a procedimento de filtração por membrana e atraso na incubação de coliformes fecais. Proteína peptona, triptose e extrato de levedura fornecem os nutrientes necessários para o crescimento de coliformes fecais. A lactose é a fonte de carbono e carboidratos fermentáveis no meio. Os sais biliares inibem o crescimento de contaminantes Gram-positivos microrganismos. O azul de anilina é um corante trifenilmetano que suprime o crescimento de muitos microorganismos gram-positivos. O azul de anilina, juntamente com o ácido rosólico, forma o sistema indicador do meio. Os filtros de membrana, através dos quais a amostra de água é passada, são colocados assepticamente nas placas de base do M-FC Agar. Se coliformes totais devem ser estimados, a incubação é realizada a 35-37 ° C, enquanto que se for estimado o número de coliformes fecais, a incubação é realizada a 44-45 ° C. Os coliformes formarão colônias azuis, enquanto os não-coliformes formarão colônias de cor cinza na base de ágar M-FC. Controle de qualidade Aparência: Amarelo claro a amarelo acinzentado, pode ter um leve escoamento homogêneo de pó esverdeado verde ou azul Gelificação: Firme, comparável com gel de ágar a 1,5% Cor e clareza do meio preparado: Após a adição de ácido rosólico a 1%: Forma um gel ligeiramente opalescente de cor vermelha em placas de Petri Reação: Reação de solução aquosa a 5,21% p / v a 25 ° C. pH: 7,4 ± 0,2 pH: 7,20-7,60 Resposta Cultural Organismo: Enterococcus faecalis ATCC 29212 Inoculação: >=10³ Crescimento a 35-37°C: Inibido Crescimento a 45,5°C: Inibido Cor da Colônia (em filtro de membrana): - Organismo: Escherichia coli ATCC 25922 Inoculação: 50-100 Crescimento a 35-37°C: Exuberante Crescimento a 45,5°C: Exuberante Cor da Colônia (em filtro de membrana): Azul Claro Organismo: Salmonella Typhimurium ATCC 14028 Inoculação: 50-100 Crescimento a 35-37°C: Exuberante Crescimento a 45,5°C: Inibido Cor da Colônia (em filtro de membrana): Rosado Organismo: Shigella flexneri ATCC 12022 Inoculação: 50-100 Crescimento a 35-37°C: Exuberante Crescimento a 45,5°C: Inibido Cor da Colônia (em filtro de membrana): Rosado Armazenamento e prazo de validade Armazenar abaixo de 30°C em recipiente bem fechado e usar meio preparado na hora. Use antes da data de validade no rótulo. Referências: 1. Collee J. G., Fraser A. G., Marmion B. P., Simmons A., (Eds.) Mackie e McCartney, Practical Medical Microbiology, 1996, 14ª Edição, Churchill Livingstone. 2. Geldreich E. E., Clark H. F., Huff E. E. e Bert M., 1965, J. Am. Water Works Assoc., 57: 208. 3. Eaton A. D., Clesceri L. S. e Greenberg A. W., (Eds.), 2005, Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, 21st Ed., APHA, Washington, D.C. 4. Métodos Oficiais de Análise da AOAC International, 2000, 17ª Ed., AOAC International, Gaithersburg, Maryland. 5. Agência de Proteção Ambiental dos EUA, 1992, EPA-814B-92-2002, Escritório de Divisão de Águas Subterrâneas e Suporte Técnico, USEPA, Cincinnati, Ohio. 6. Bordner R. H., Winter J. A. e Scarpino P. V. (Eds.), 1978, EPA-600 / 8-78-017, Monitoramento e Suporte Ambiental Laboratório, Escritório de Pesquisa e Desenvolvimento, Agência de Proteção Ambiental dos EUA, Cincinnati, Ohio.
